Северного Кавказа
по надзору за соблюдением законодательства
в сфере массовых коммуникаций
и охране культурного наследия
ПИ №ФС77-26521 от 7 декабря 2006 года
ISSN 2073-8137
русский
english
Поиск по сайту
Адрес редакции
355017, Ставрополь, улица Мира, 310.
Телефоны
(8652) 35-25-11, 35-32-29.
E-mail
medvestnik@stgmu.ru
Журнал включён в Перечень ведущих рецензируемых научных журналов и изданий, в которых должны быть опубликованы результаты диссертаций на соискание учёной степени кандидата и доктора наук (решение Президиума ВАК Минобрнауки РФ №6/6, февраль 2010).
Журнал включён в Реферативный журнал и Базы данных ВИНИТИ РАН и зарегистрирован в Научной электронной библиотеке в базе данных Российского индекса научного цитирования на основании сублицензионного договора № 07-04/09-14 от 25 марта 2009 года.
Журнал индексируется: БД SCOPUS, Ulrich's International Periodicals Directory.
Влияние аллогенного мышечного экстракта на протеолитическую активность поврежденных скелетных мышц крыс
[Экспериментальная медицина]
Стогов Максим Валерьевич; Кононович Наталья Андреевна; Киреева Елена Анатольевна;
В эксперименте изучены отсроченные изменения протеолитической активности в скелетных мышцах, поврежденных в результате сдавливания, на фоне применения аллогенного мышечного экстракта. Исследование выполнено на 66 крысах-самцах линии Wistar: группа 1 – интактные животные; группа 2 (контроль) – животным на 3-и сутки после мышечной травмы разово вводили внутримышечно физиологический раствор; группа 3 (опыт) – животным на 3-и сутки после мышечной травмы разово вводили внутримышечно лиофилизат аллогенных мышечных белков. В передней большеберцовой (ПББМ) и камбаловидной мышце (КМ) поврежденного сегмента определяли протеолитическую активность (ПА) и содержание миозина, в сыворотке крови – активность креатинфосфокиназы (КФК). Обнаружено, что применение лиофилизата мышечных белков достоверно снижало ПА в ПББМ и КМ. Значимых изменений уровня миозина в группах крыс в отдаленные сроки эксперимента (30–90 дней) не отмечено. Активность КФК в сыворотке крови крыс опытной группы была достоверно ниже значений группы контроля. Таким образом, введение аллогенного мышечного экстракта, полученного из поврежденных скелетных мышц, способствовало снижению ПА в травмированных мышцах у крыс.
Список литературы:
1. Лычагин А. В., Грицюк А. А., Корытин В. С. Лечение последствий ранений голени: продолжение развития технологии Илизарова. Гений ортопедии. 2022;28(1):69-75. https://doi.org/10.18019/1028-4427-2022-28-1-69-75
2. Fernandez J. J., Smith S. R. Traumatic rhabdomyolysis: crush syndrome, compartment syndrome, and the ‘found down’ patient. J. Am. Acad. Orthop. Surg. 2024;32(4):e166-e174. https://doi.org/10.5435/JAAOS-D-23-00734
3. Long B., Liang S. Y., Gottlieb M. Crush injury and syndrome: a review for emergency clinicians. Am. J. Emerg. Med. 2023;69:180-187. https://doi.org/10.1016/j.ajem.2023.04.029
4. Murata I., Imanari M., Komiya M., Kobayashi J., Inoue Y., Kanamoto I. Icing treatment in rats with crush syndrome can improve survival through reduction of potassium concentration and mitochondrial function disorder effect. Exp. Ther. Med. 2020;19(1):777-785. https://doi.org/10.3892/etm.2019.8230
5. Wang W., Wang Y., Yang J. Protective effects of ischemic postconditioning on skeletal muscle following crush syndrome in the rat. Acta Cir. Bras. 2021;36(7):e360701. https://doi.org/10.1590/ACB360701.eCollection 2021
6. Haruta Y., Kobayakawa K., Saiwai H., Hata K., Tamaru T. [et al.]. Zinc chelator treatment in crush syndrome model mice attenuates ischemia-reperfusion-induced muscle injury due to suppressing of neutrophil infiltration. Sci. Rep. 2022;12(1):15580. https://doi.org/10.1038/s41598-022-19903-0
7. Kobayashi J., Murata I. Nitrite as a pharmacological intervention for the successful treatment of crush syndrome. Physiol. Rep. 2018;6(5):e13633. https://doi.org/10.14814/phy2.13633
8. Li N., Wang X., Wang Y., Wang P., Sun N. [et al.]. Delayed step-by-step decompression with DSF alleviates skeletal muscle crush injury by inhibiting NLRP3/CASP-1/GSDMD pathway. Cell Death Discov. 2023;9(1):280. https://doi.org/10.1038/s41420-023-01570-3
9. Endo Y., Hwang C. D., Zhang Y., Olumi S., Koh D. J. [et al.]. VEGFA promotes skeletal muscle regeneration in aging. Adv. Biol. (Weinh). 2023;7(10):e2200320. https://doi.org/10.1002/adbi.202200320
10. Gao H., Zhao Z., Li J., Guo Z., Zhang F. [et al.]. Plateletrich plasma promotes skeletal muscle regeneration and neuromuscular functional reconstitution in a concentrationdependent manner in a rat laceration model. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2023;672:185-192. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2023.05.123
11. Graca F. A., Minden-Birkenmaier B. A., Stephan A., Demontis F., Labelle M. Signaling roles of platelets in skeletal muscle regeneration. Bioessays. 2023;45(12):e2300134. https://doi.org/10.1002/bies.202300134
12. Barbalho S. M., Prado Neto E. V., De Alvares Goulart R., Bechara M. D., Baisi Chagas E. F. [et al.]. Myokines: a descriptive review. J. Sports Med. Phys. Fitness. 2020;60(12):1583-1590. https://doi.org/10.23736/S0022-4707.20.10884-3
13. Waldemer-Streyer R. J., Kim D., Chen J. Muscle cellderived cytokines in skeletal muscle regeneration. FEBS J. 2022;289(21):6463-6483. https://doi.org/10.1111/febs.16372
14. Liu Y., Yu M., Chen L., Liu J., Li X. [et al.]. Systemic review of animal models used in the study of crush syndrome. Shock. 2022;57(4):469-478. https://doi.org/10.1097/SHK.0000000000001911
15. Ковинька М. А., Десятниченко К. С., Гребнева О. Л. Протеолитическая активность неколлагеновых белков, получаемых при диссоциативном экстрагировании костной ткани. Гений ортопедии. 1997;(3):35-37.
Ключевые слова: скелетные мышца, травма мышц, стимуляция репарации, аллогенный экстракт, протеолиз
Учредители:
Ставропольская государственная медицинская академия
Государственный научно-исследовательский институт курортологии
Пятигорская государственная фармацевтическая академия