Поиск по сайту
Адрес редакции
355017, Ставрополь, улица Мира, 310.
Телефоны
(8652) 35-25-11, 35-32-29.
E-mail
medvestnik@stgmu.ru
Журнал включён в Перечень ведущих рецензируемых научных журналов и изданий, в которых должны быть опубликованы результаты диссертаций на соискание учёной степени кандидата и доктора наук (решение Президиума ВАК Минобрнауки РФ №6/6, февраль 2010).
Журнал включён в Реферативный журнал и Базы данных ВИНИТИ РАН и зарегистрирован в Научной электронной библиотеке в базе данных Российского индекса научного цитирования на основании сублицензионного договора № 07-04/09-14 от 25 марта 2009 года.
Журнал индексируется: БД SCOPUS, Ulrich's International Periodicals Directory.
[Оригинальные исследования] [Внутренние болезни]
Корой Павел Владимирович; Дудов Темирлан Русланович; Ягода Александр Валентинович;
В исследовании изучалась взаимосвязь компонентов системы матриксных металлопротеиназ (ММП) с особенностями течения хронических заболеваний печени (ХЗП). В исследование включено 240 больных ХЗП вирусной или алкогольной этиологии в возрасте от 18 до 64 лет. Хронический гепатит (ХГ) выявлен у 81 пациента, цирроз печени (ЦП) диагностирован в 159 случаях. 72 практически здоровых человека составили группу контроля. Определяли содержание в крови ММП-1, ММП-9 и тканевого ингибитора матриксных металлопротеиназ-1 (ТИМП-1), рассчитывали соотношение ТИМП-1/ММП-1, ТИМП-1/ММП-9. При ХЗП наблюдалось увеличение содержания ММП-1 и ТИМП-1 в крови, соотношения ТИМП-1/ММП-9 и снижение ММП-9 и ТИМП-1/ММП-1. У пациентов с циррозом печени показатели ТИМП-1, ТИМП-1/ММП-1, ТИМП-1/ММП-9 были выше, а ММП-9 – ниже, чем в случаях хронического гепатита. Риск обнаружения цирроза при патологии печени увеличивался в 5 раз при уровнях ТИМП-1 выше 547 нг/мл, в 2 раза – при величинах ММП-1 менее 15,2 нг/мл, ММП-9 ниже 154 нг/мл, ТИМП-1/ММП-1 более 36,5 у.е. и в 3 раза – при показателях ТИМП-1/ММП-9 выше 4,4 у.е. Дисбаланс в системе матриксных металлопротеиназ ассоциирован с течением и тяжестью хронических заболеваний печени. Смещение соотношения в сторону экспрессии ТИМП-1 отражает усиление процессов фиброгенеза, максимальная интенсивность которого определяется в случаях формирования цирроза печени.
Список литературы:
1. Cheemerla S., Balakrishnan M. Global epidemiology of chronic liver disease. Clin. Liver Dis. (Hoboken). 2021;17(5):365-370. https://doi.org/10.1002/cld.1061
2. Geervliet E., Bansal R. Matrix metalloproteinases as potential biomarkers and therapeutic targets in liver diseases. Cells. 2020;9:12-12. https://doi.org/10.3390/cells9051212
3. Duarte S., Baber J., Fujii T., Coito A. J. Matrix metalloproteinases in liver injury, repair and fibrosis. Matrix Biol. 2015;44-46:147-156. https://doi.org/10.1016/j.matbio.2015.01.004
4. Böttcher K., Pinzani M. Pathophysiology of liver fibrosis and the methodological barriers to the development of anti- fibrogenic agents. Adv. Drug Deliv. Rev. 2017;121:3-8. https://doi.org/10.1016/j.addr.2017.05.016
5. Tsuchida T., Friedman S. L. Mechanisms of hepatic stellate cell activation. Nat. Rev. Gastroenterol. Hepatol. 2017;14:397-411. https://doi.org/10.1038/nrgastro.2017.38
6. Naim A., Pan Q., Baig M. S. Matrix metalloproteinases (MMPs) in liver diseases. J. Clin. Exp. Hepatol. 2017;7:367-372. https://doi.org/10.1016/j.jceh.2017.09.004
7. Roeb E. Matrix metalloproteinases and liver fibrosis (translational aspects). Matrix Biol. 2018;68-69:463-473. https://doi.org/10.1016/j.matbio.2017.12.012
8. Roderfeld M. Matrix metalloproteinase functions in hepatic injury and fibrosis. Matrix Biol. 2018;68-69:452-462. https://doi.org/10.1016/j.matbio.2017.11.011
9. Cui N., Hu M., Khalil R. A. Biochemical and biological attributes of matrix metalloproteinases. Prog. Mol. Biol. Transl. Sci. 2017;147:1-73. https://doi.org/10.1016/bs.pmbts.2017.02.005
10. Du C., Jiang M., Wei X., Qin J., Xu H. [et al.]. Transplantation of human matrix metalloproteinase-1 gene-modified bone marrow-derived mesenchymal stem cell attenuates CCL4-induced liver fibrosis in rats. Int. J. Mol. Med. 2018;41:3175-3184. https://doi.org/10.3892/ijmm.2018.3516
11. Prystupa A., Boguszewska-Czubara A., Bojarska-Junak A., Torun-Jurkowska A., Rolinski J. [et al.]. Activity of MMP-2, MMP-8 and MMP-9 in serum as a marker of progression of alcoholic liver disease in people from Lublin Region, eastern Poland. Ann. Agric. Environ. Med. 2015;22:325-328. https://doi.org/10.5604/12321966.1152088
12. Prystupa A., Szpetnar M., Boguszewska-Czubara A., Grzybowski A., Sak J., Załuska W. Activity of MMP1 and MMP13 and amino acid metabolism in patients with alcoholic liver cirrhosis. Medical Science Monitor. 2015;21:1008-1014. https://doi.org/10.12659/MSM.892312
13. Martinez-Castillo M., Hernandez-Barragan A., Flores-Vasconcelos I., Galicia-Moreno M., Rosique-Oramas D. [et al.]. Production and activity of matrix metalloproteinases during liver fibrosis progression of chronic hepatitis C patients. World J. Hepatol. 2021;13(2):218-232. https://doi.org/10.4254/wjh.v13.i2.218
14. Badra G., Lotfy M., El-Refaie A., Obada M., Abdelmonem E. [et al.]. Significance of serum matrix metalloproteinase- 9 and tissue inhibitor of metalloproteinase-1 in chronic hepatitis C patients. Acta Microbiol. Immunol. Hung. 2010;57(1):29-42. https://doi.org/10.1556/AMicr.57.2010.1.3
15. Moriya K., Nishimura N., Namisaki T., Takaya H., Sawada Y. [et al.]. Zinc administration and improved serum markers of hepatic fibrosis in patients with autoimmune hepatitis. J. Clin. Med. 2021;10:2465. https://doi.org/10.3390/jcm10112465
16. Calabro S. R., Annette E. M., Alison J. M., Thomas T., Victoria W. W. [et al.]. Hepatocyte produced matrix metalloproteinases are regulated by CD147 in liver fibrogenesis. PLoS One. 2014;9(7):e90571. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0090571
17. Горелова И. С., Скляр Л. Ф., Маркелова Е. В., Симакова А. И., Зенин И. В. Состояние внеклеточного матрикса при HCV-ассоциированном фиброзе печени. Медицинская иммунология. 2017;19(1):35-44. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2017-1-35-44
18. Latronico T., Mascia C., Pati I., Zuccala P., Mengoni F. [et al.]. Liver fibrosis in HCV monoinfected and HIV/HCV coinfected patients: dysregulation of matrix metalloproteinases (MMPs) and their tissue inhibitors (TIMPs) and effect of HCV protease inhibitors. Int. J. Mol. Sci. 2016;17:455. https://doi.org/10.3390/ijms17040455
19. Liang B., Li Y., Zhao A., Xie F., Guo Z. Clinical utility of serum matrix metalloproteinase-2 and tissue inhibitor of metalloproteinase-2 concentrations in the assessment of liver fibrosis due to chronic hepatitis B. J. Int. Med. Res. 2012;40(2):631-639. https://doi.org/10.1177/147323001204000225
20. Medeiros T., Saraiva G. N., Moraes L. A., Gomes A. C., Lacerda G. S. Liver fibrosis improvement in chronic hepatitis C after direct acting-antivirals is accompanied by reduced profibrogenic biomarkers-a role for MMP-9/TIMP-1. Dig. Liver Dis. 2020;52(10):1170-1177. https://doi.org/10.1016/j.dld.2020.05.004
21. Guesiry D. E., Moez P., Hossam N., Kassem M. Usefulness of non-invasive serum markers for predicting liver fibrosis in Egyptian patients with chronic HCV infection. Egypt. J. Immunol. 2011;18(2):1-12.
22. Pérez‑Is L., Collazos J., Fuente B., Morano L., Rivas-Carmenado
M. [et al.]. 24-month decline of non-invasive liver fibrosis markers in HCV-mono and HCV/HIV coinfection after direct-acting antiviral therapy. Scientific Reports. 2022;12:3828. https://doi.org/10.1038/s41598-022-07548-y
23. Chen J., Xu W., Chen Y., Xie X., Zhang Y. [et al.]. Matrix metalloproteinase 9 facilitates hepatitis B virus replication through binding with type I interferon (IFN) receptor 1 to repress IFN/JAK/STAT signaling. J. Virol. 2017;91(8):е01824-16. https://doi.org/10.1128/JVI.01824-16
24. Ulitzky L., Lafer M. M., KuKuruga M. A., Silberstein E., Cehan N., Taylor D. R. A new signaling pathway for HCV inhibition by estrogen: GPR30 activation leads to cleavage of occludin by MMP-9. PLoS One. 2016;11:e0145212. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0145212
25. Wang X., Maretti-Mira A. C., Wang L., Deleve L. D. Liver- selective MMP-9 inhibition in the rat eliminates ischemia- reperfusion injury and accelerates liver regeneration. Hepatology. 2019;69:314-328. https://doi.org/10.1002/hep.30169
26. Bruno C. M., Valenti M., Bertino G., Ardiri A., Consolo M. [et al.]. Altered pattern of circulating matrix metalloproteinases -2, – 9 and tissue inhibitor of metalloproteinase-2 in patients with HCV-related chronic hepatitis. Relationship to histological features. Panminerva Med. 2009;51(4):191-196.
27. Lam S., Singh R., Dillman J. R., Trout A. T., Serai S. D. [et al.]. Serum matrix metalloproteinase 7 is a diagnostic biomarker of biliary injury and fibrosis in pediatric autoimmune liver disease. Hepatology Communications. 2020;4(11):1680-1693. https://doi.org/10.1002/hep4.1589
28. Behairy O. G., El-Bakry M. M., Mansour A. I., Abdelrahman A. M. N., Emam G. M. Matrix metalloproteinase-1 as a non-invasive biomarker to assess liver fibrosis in children with chronic liver disease. Egypt. Liver J. 2021;11:80. https://doi.org/10.1186/s43066-021-00148-x
29. Kerola A., Lampela H., Lohi J., Heikkilla P., Mutanen A. [et al.]. Increased MMP-7 expression in biliary epithelium and serum underpins native liver fibrosis after successful portoenterostomy in biliary atresia. J. Path. Clin. Res. 2016;2:187-198. https://doi.org/10.1002/cjp2.50
30. Attallah A. M., Badr El-Din N. K., Omran M. M., Farid K., Abd El-Wahab A. H. Assessment of matrix metalloproteinase-1 for marking liver cirrhosis in chronic hepatitis C patients. Egypt. J. Immunol. 2011;18(1):33-42.
Ключевые слова: хронические заболевания печени, хронический гепатит, цирроз печени, матриксные металлопротеиназы, тканевые ингибиторы матриксных металлопротеиназ