Северного Кавказа
по надзору за соблюдением законодательства
в сфере массовых коммуникаций
и охране культурного наследия
ПИ №ФС77-26521 от 7 декабря 2006 года
ISSN 2073-8137
русский
english
Поиск по сайту
Адрес редакции
355017, Ставрополь, улица Мира, 310.
Телефоны
(8652) 35-25-11, 35-32-29.
E-mail
medvestnik@stgmu.ru
Журнал включён в Перечень ведущих рецензируемых научных журналов и изданий, в которых должны быть опубликованы результаты диссертаций на соискание учёной степени кандидата и доктора наук (решение Президиума ВАК Минобрнауки РФ №6/6, февраль 2010).
Журнал включён в Реферативный журнал и Базы данных ВИНИТИ РАН и зарегистрирован в Научной электронной библиотеке в базе данных Российского индекса научного цитирования на основании сублицензионного договора № 07-04/09-14 от 25 марта 2009 года.
Журнал индексируется: БД SCOPUS, Ulrich's International Periodicals Directory.
Особенности формирования внеклеточных ловушек в ответ на стимуляцию нейтрофильных лейкоцитов тромбином у больных сахарным диабетом и различными вариантами диабетического поражения стоп
[Внутренние болезни]
Друк Инна Викторовна; Новиков Дмитрий Георгиевич; Золотов Александр Николаевич; Кириченко Николай Александрович; Кирх Елизавета Александровна; Савочкина Альбина Юрьевна; Ходус Владимир Владимирович; Сорокина Елена Альбертовна;
Определяли способность к формированию внеклеточных ловушек клетками крови в составе фракций мононуклеарных клеток и гранулоцитов у пациентов с сахарным диабетом 1-го и 2-го типа, осложнённым синдромом диабетической стопы без (n=10) и с нейроостеоартропатией Шарко (n=8). В мононуклеарной фракции пациентов обнаружено 15–30 % нейтрофилов низкой плотности, в группе контроля (n=12) их доля была минимальной. Спонтанное и стимулированное тромбином образование нитевидных внеклеточных ловушек было наиболее выражено у больных нейроостеоартропатией. В этой группе выявлено также повышение уровня интерлейкина-8 (в 4,4 раза) и цитрулли нированного гистона H3 (в 5,7 раза) по сравнению с группой контроля. Полученные данные свидетельствуют о вероятной роли воспаления, опосредованного нейтрофилами низкой плотности, в патогенезе нейроостеоартропатии.
Список литературы:
1. Zhu Y., Xia X., He Q., Xiao Q. A., Wang D. [et al.]. Diabetes-associated neutrophil NETosis: pathogenesis and interventional target of diabetic complications. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2023;14:1202463. https://doi.org/10.3389/fendo.2023.1202463
2. Volmer-Thole M., Lobmann R. Neuropathy and Diabetic Foot Syndrome. International J. Mol. Sci. 2016;17(6):917. https://doi.org/10.3390/ijms17060917
3. Njeim R., Azar W. S., Fares A. H., Azar S. T., Kfoury Kassouf H., Eid A. A. NETosis contributes to the pathogenesis of diabetes and its complications. J. Mol. Endocrinol. 2020;65(4):R65-R76. https://doi.org/10.1530/JME-20-0128
4. Dumont B. L., Neagoe P.-E., Charles E., Villeneuve L., Tardif J.-C. [et al.]. Low-Density Neutrophils Contribute to Subclinical Inflammation in Patients with Type 2 Diabetes. Int. J. Molecular Sci. 2024;25(3):1674. https://doi.org/10.3390/ijms25031674
5. Fu Y., Wen Z., Fan J. Interaction of low-density neutrophils with other immune cells in the mechanism of inflammation. Mol. Med. 2025;31:133. https://doi.org/10.1186/s10020-025-01053-1
6. Hong C. W. Current Understanding in Neutrophil Differentiation and Heterogeneity. Immune Netw. 2017;17(5):298-306. https://doi.org/10.4110/in.2017.17.5.298
7. Wong S. L., Demers M., Martinod K., Gallant M., Wang Y. [et al.]. Diabetes primes neutrophils to undergo NETosis, which impairs wound healing. Nat. Med. 2015;21(7):815-819. https://doi.org/10.1038/nm.3887
8. Denny M. F., Yalavarthi S., Zhao W., Thacker S. G., Anderson M. [et al.]. Distinct subset of proinflammatory neutrophils isolated from patients with systemic lupus erythematosus induces vascular damage and synthesizes type I IFNs. J. Immunol. 2010;184(6):3284-3297. https://doi.org/10.4049/jimmunol.0902199
9. Marini O., Costa S., Bevilacqua D., Calzetti F., Tamassia N. [et al.]. Mature CD10+ and immature CD10– neutrophils present in G-CSF-treated donors display opposite effects on T cells. Blood. 2017;129(10):1343-1356. https://doi.org/10.1182/blood-2016-04-713206
10. Sagiv J. Y., Michaeli J., Assi S., Mishalian I., Kisos H. [et al.]. Phenotypic diversity and plasticity in circulating neutrophil subpopulations in cancer. Cell. Rep. 2015;10(4):562-573. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2014.12.039
11. Ibrahim N., Knöbl V., Hayden H., Bauer W. M., Worel N. [et al.]. Human monocyte subsets differ in their capacity to form extracellular traps. Cell. Death Discovery. 2024;10(1):281. https://doi.org/10.1038/s41420-024-02034-y
12. de Bont C. M., Boelens W. C., Pruijn G. J. M. NETosis, complement, and coagulation: a triangular relationship. Cell. Mol. Immunol. 2019;16(1):19-27. https://doi.org/10.1038/s41423-018-0024-0
13. Zhu Y., Xia X., He Q., Xiao Q.-A., Wang D. [et al.]. Genetic Polymorphisms of PADI4 and Their Clinical Implications in Diabetic Patients Undergoing Orthopedic or Traumatological Surgery. Diagnostics (Basel). 2024;14(6):673. https://doi.org/10.3390/diagnostics14060673
14. Yang S., Gu Z., Lu C., Zhang T., Guo X. [et al.]. Neutrophil Extracellular Traps Are Markers of Wound Healing Impairment in Patients with Diabetic Foot Ulcers Treated in a Multidisciplinary Setting. Adv. Wound. Care (New Rochelle). 2020;9(1):16-27. https://doi.org/10.1089/wound.2019.0943
15. Tilley D. O., Abuabed U., Zimny Arndt U., Schmid M., Florian S. [et al.]. Histone H3 clipping is a novel signature of human neutrophil extracellular traps. Elife. 2022;11:e68283. https://doi.org/10.7554/eLife.68283
16. Новиков Д. Г., Золотов А. Н., Индутный А. В., Мордык А. В., Кириченко Н. А. [и др.]. Характеристика продукции нейтрофильных внеклеточных ловушек и концентрации цитруллинированного гистона H3 у детей, больных туберкулезом. Бюллетень сибирской медицины. 2024;23(4):95-104. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2024-4-95-104
17. Karasu E., Halbgebauer R., Schütte L., Greven J., Bläsius F. M. [et al.]. A conformational change of C-reactive protein drives neutrophil extracellular trap formation in inflammation. BMC Biol. 2025;23(1):4. https://doi.org/10.1186/s12915-024-02093-8
18. Vulesevic B., Lavoie S. S., Neagoe P. E., Dumas Е., Räkel А. [et al.]. CRP induces NETosis in heart failure patients with or without diabetes. Immunohorizons. 2019;3(8):378-388. https://doi.org/10.4049/immunohorizons.1900026
19. Teijeira A., Garasa S., Ochoa M. D. C., Cirella A., Olivera I. [et al.]. Differential Interleukin-8 thresholds for chemotaxis and netosis in human neutrophils. Eur. J. Immunol. 2021;51(9):2274-2280. https://doi.org/10.1002/eji.202049029
20. Marcos-Jubilar M., Lecumberri R., Páramo J. A. Immunothrombosis: Molecular Aspects and New Therapeutic Perspectives. J. Clin. Med. 2023;12(4):1399. https://doi.org/10.3390/jcm12041399
21. Lim C. H., Adav S. S., Sze S. K., Choong Y. K., Saravanan R., Schmidtchen A. Thrombin and Plasmin Alter the Proteome of Neutrophil Extracellular Traps. Front. Immunol. 2018;9:1554. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.01554
22. Yousefi S., Simon H. U. NETosis – Does It Really Represent Nature’s «Suicide Bomber»? Front. Immunol. 2016;7:328. https://doi.org/10.3389/fimmu.2016.00328
Ключевые слова: сахарный диабет, синдром диабетической стопы, нейроостеоартропатия, нейтрофилы низкой плотности, нетоз, нейтрофильные внеклеточные ловушки, цитруллинированный гистон H3, интерлейкин-8, С-реактивный белок
Учредители:
Ставропольская государственная медицинская академия
Государственный научно-исследовательский институт курортологии
Пятигорская государственная фармацевтическая академия