Северного Кавказа
по надзору за соблюдением законодательства
в сфере массовых коммуникаций
и охране культурного наследия
ПИ №ФС77-26521 от 7 декабря 2006 года
ISSN 2073-8137
русский
english
Поиск по сайту
Адрес редакции
355017, Ставрополь, улица Мира, 310.
Телефоны
(8652) 35-25-11, 35-32-29.
E-mail
medvestnik@stgmu.ru
Журнал включён в Перечень ведущих рецензируемых научных журналов и изданий, в которых должны быть опубликованы результаты диссертаций на соискание учёной степени кандидата и доктора наук (решение Президиума ВАК Минобрнауки РФ №6/6, февраль 2010).
Журнал включён в Реферативный журнал и Базы данных ВИНИТИ РАН и зарегистрирован в Научной электронной библиотеке в базе данных Российского индекса научного цитирования на основании сублицензионного договора № 07-04/09-14 от 25 марта 2009 года.
Журнал индексируется: БД SCOPUS, Ulrich's International Periodicals Directory.
Обоснование выбора методики функциональной оценки регенерации нерва при замещении дефекта биосинтетическим аналогом
[Обзоры]
Покровский Владимир Михайлович; Арделян Александр Николаевич; Арутюнян Нанар Армоевна; Ташу Бэла Султанмуратовна; Щербаков Олег Ярославович; Пилипенко Станислав Сергеевич;
Были проанализированы существующие методы функциональной оценки регенерации нервов для выбора подходящего метода при замещении дефекта биосинтетическим аналогом. Поиск литературных источников осуществлен в базах данных eLIBRARY и PubMed с выбором зарубежных статей, опубликованных за последние 10 лет, в которых представлены дизайны исследований, включающих методы функциональной оценки процесса регенерации нерва наряду с классическими морфологическими методами. Анализ представленных работ позволил сделать выбор в пользу сочетания малоинвазивного и инвазивного методов. Малоинвазивный подход представлен нейромиографической методикой оценки сигнала в мышце в ответ на чрескожную стимуляцию точки проекции седалищного нерва. В качестве инвазивного подхода планируется использование регистрации сигнала непосредственно в нерве, то есть оценка нейрограммы. Основанием для выбора нейрографии послужили результаты эксперимента на седалищном нерве наркотизированной крысы с использованием в качестве модели повреждения нерва анодного блока. Объединение данных методов может повысить эффективность функциональной оценки регенерации нерва при замещении дефекта биосинтетическим аналогом.
Список литературы:
1. Pedrini F. A., Boriani F., Bolognesi F., Fazio N., Marchetti Cl., Baldini N. Cell-Enhanced Acellular Nerve Allografts for Peripheral Nerve Reconstruction: A Systematic Review and a Meta-Analysis of the Literature. Neurosurgery.2019;85(5):575-604. https://doi.org/10.1093/neuros/nyy374
2. Wang Y., Zhao Z., Ren Z., Zhao B., Zhang L. [et al.]. Recellularized nerve allografts with differentiated mesenchymal stem cells promote peripheral nerve regeneration. Neurosci. Lett. 2012;514(1):96-101. https://doi.org/10.1016/j.neulet.2012.02.066
3. Luo H., Zhu B., Zhang Y., Jin Y., Yan J. Tissue-engineered nerve constructs under a microgravity system for peripheral nerve regeneration. Tissue Eng. Part A. 2015;21(1-2):267-276. https://doi.org/10.1089/ten.tea.2013.0565
4. Zhu Z., Zhou X., He B., Dai T., Zheng C. [et al.]. Ginkgo Biloba Extract (EGb 761) Promotes peripheral nerve regeneration and neovascularization after acellular nerve allografts in a rat model. Cell. Mol. Neurobiol. 2015;35(2):273-282. https://doi.org/10.1007/s10571-014-0122-1
5. Hooijmans C. R., Rovers M. M., De Vries R. B., Leenaars M., Ritskes-hoitinga M., Langendam M. W. SYRCLE’s risk of bias tool for animal studies. BMC Med. Res. Methodol. 2014;14(1):1-9. https://doi.org/10.1186/1471-2288-14-43
6. Sowa Y., Imura T., Numajiri T., Nishino K., Fushiki S. Adipose-derived stem cells produce factors enhancing peripheral nerve regeneration: influence of age and anatomic site of origin. Stem. Cells Dev. 2012;21(11):1852-1862. https://doi.org/10.1089/scd.2011.0403
7. Stratton J. A., Kumar R., Sinha S., Shah P., Stykel M. [et al.]. Purification and characterization of schwann cells from adult human skin and nerve. Eneuro. New Res. 2017;4:1-15. https://doi.org/10.1523/ENEURO.0307-16.2017
8. Kim H. S., Lee J., Lee D. Y., Kim Y. D., Kim J. Y. [et al.]. Schwann cell precursors from human pluripotent stem cells as a potential therapeutic target for myelin repair. Stem. Cell. Rep. 2017;8(6):1714-1726. https://doi.org/10.1016/j.stemcr.2017.04.011
9. Khuong H. T., Kumar R., Senjaya F., Grochmal J., Ivanovic A. [et al.]. Skin derived precursor Schwann cells improve behavioral recovery for acute and delayed nerve repair. Exp. Neurol. 2014;254:168-179. https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2014.01.002
10. Wang Y., Li W. Y., Jia H., Zhai F. G., Qu W. R. [et al.]. KLF7-transfected Schwann cell graft transplantation promotes sciatic nerve regeneration. Neuroscience.2017;340:319-332. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2016.10.069
11. Jesuraj N. J., Santosa K. B., Macewan M. R., Moore A. M., Kasukurthi R. [et al.]. Schwann cells seeded in acellular nerve grafts improve functional recovery. Muscle Nerve.2014;49(2):267-276. https://doi.org/10.1002/mus.23885
12. Saheb-Al-Zamani M., Yan Y., Farber S. J., Hunter D. A., Newton P. [et al.]. Limited regeneration in long acellular nerve allografts is associated with increased Schwann cell senescence. Exp. Neurol. 2013;247:165-177. https://doi.org/10.1016%2Fj.expneurol.2013.04.011
13. Zhang C., Lv G. Repair of sciatic nerve defects using tissue engineered nerves. Neural. Regen. Res. 2013;25(821):637-647. https://doi.org/10.3969/j.issn.1673-5374.2013.21.007
14. Zhou L. N., Zhang J. W., Liu X. L., Zhou L. H. Co-Graft of bone marrow stromal cells and Schwann cells into acellular nerve scaffold for sciatic nerve regeneration in rats. J. Oral Maxillofac. Surg. 2015;73(8):1651-1660. https://doi.org/10.1016/j.joms.2015.02.013
15. Zhang Y. R., Ka K., Zhang G. C., Zhang H., Shang Y. [et al.]. Repair of peripheral nerve defects with chemically extracted acellular nerve allografts loaded with neurotrophic factors-transfected bone marrow mesenchymal stem cells. Neural. Regen. Res. 2015;10(9):1498-506. https://doi.org/10.4103%2F1673-5374.165523
16. Li Y. J., Zhao B. L., Lv H. Z., Qin Z. G., Luo M. Acellular allogeneic nerve grafting combined with bone marrow mesenchymal stem cell transplantation for the repair of long-segment sciatic nerve defects: biomechanics and validation of mathematical models. Neural. Regen. Res. 2016;11(8):1322-1326. https://doi.org/10.4103/1673-5374.189198
17. Kaizawa Y., Kakinoki R., Ikeguchi R., Ohta S., Noguchi T. [et al.]. A nerve conduit containing a vascular bundle and implanted with bone marrow stromal cells and decellularized allogenic nerve matrix. Cell. Transplant. 2017;26(2):215-228. https://doi.org/10.3727/096368916x692951
18. Jiang C. Q., Hu J., Xiang J. P., Zhu J. K., Liu X. L., Luo P. Tissue-engineered rhesus monkey nerve grafts for the repair of long ulnar nerve defects: Similar outcomes to autologous nerve grafts. Neural. Regen. Res. 2016;11(11):1845-1850. https://doi.org/10.4103/1673-5374.194757
19. Xiang F., Wei D., Yang Y., Chi H., Yang K., Sun Y. Tissue-engineered nerve graft with tetramethylpyrazine for repair of sciatic nerve defects in rats. Neurosci. Lett. 2017;638:114-120. https://doi.org/10.1016/j.neulet.2016.12.026
20. Jia H., Wang Y., Tong X. J., Liu G. B., Li Q. [et al.]. Sciatic nerve repair by acellular nerve xenografts implanted with BMSCs in rats xenograft combined with BMSCs. Synapse.2012;66(3):256-269. https://doi.org/10.1002/syn.21508
21. Wang Y., Jia H., Li W. Y., Tong X. J., Liu G. B., Kang S. W. Synergistic effects of bone mesenchymal stem cells and chondroitinase ABC on nerve regeneration after acellular nerve allograft in rats. Cell. Mol. Neurobiol. 2012;32(3):361-371. https://doi.org/10.1007/s10571-011-9764-4
22. Pang C. J., Tong L., Ji L. L., Wang Z., Zhang X. [et al.]. Synergistic effects of ultrashort wave and bone marrow stromal cells on nerve regeneration with acellular nerve allografts. Synapse. 2013;67(10):637-647. https://doi.org/10.1002/syn.21669
23. Gao S., Zheng Y., Cai Q., Deng Z., Yao W. [et al.]. Combination of acellular nerve graft and Schwann cells-like cells for rat sciatic nerve regeneration. Neural. Plast. 2014;2014:139085. https://doi.org/10.1155/2014/139085
24. Wang Y., Jia H., Li W. Y., Li X. G., Deng L. [et al.]. Molecular examination of bone marrow stromal cells and chondroitinase ABC-assisted acellular nerve allograft for peripheral nerve regeneration. Exp. Ther. Med. 2016;12(4):1980-1992. https://doi.org/10.3892%2Fetm.2016.3585
25. Wang H., Wu J., Zhang X., Ding L., Zeng Q. Study of synergistic role of allogenic skin-derived precursor differentiated Schwann cells and heregulin-1 in nerve regeneration with an acellular nerve allograft. Neurochem. Int. 2016;97:146-153. https://doi.org/10.1016/j.neuint.2016.04.003
26. Godinho M., Teh L., Pollett M. A., Goodman D., Hodgetts S. I. [et al.]. Immunohistochemical, ultrastructural and functional analysis of axonal regeneration through peripheral nerve grafts containing schwann cells expressing BDNF, CNTF or NT3. PLoS One. 2013;8(8):e69987. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0069987
27. Zhang Y. R., Zhang H., Zhang G. C., Ka K., Huang W. H. Combining acellular nerve allografts with brain-derived neurotrophic factor transfected bone marrow mesenchymal stem cells restores sciatic nerve injury better than either intervention alone. Neural. Regen. Res. 2014;9(20):1814-1819. https://doi.org/10.4103%2F1673-5374.143427
28. Meder T., Prest T., Skillen C., Marchal L., Yupanqui V. T. [et al.]. Nerve-specific extracellular matrix hydrogel promotes functional regeneration following nerve gap injury. NPJ Regen. Med. 2021;6(1):69. https://doi.org/10.1038/s41536-021-00174-8
29. Wang D., Huang X., Fu G., Gu L., Liu X. [et al.]. A simple model of radial nerve injury in the rhesus monkey to evaluate peripheral nerve repair. Neural. Regen. Res. 2014;9(10):1041-1046. https://doi.org/10.4103%2F1673-5374.133166
30. Khezri M. K., Turkkan А., Koc С., Salman В., Levent Р. [et al.]. Uridine treatment improves nerve regeneration and functional recovery in a rat model of sciatic nerve injury. Turk Neurosurgery. 2022;32(5). https://doi.org/10.5137/1019-5149.jtn.36142-21.2
31. Zhao Z., Wang Y., Peng J., Ren Z., Zhang L. [et al.]. Improvement in nerve regeneration through a decellularized nerve graft by supplementation with bone marrow stromal cells in fibrin. Cell. Transplant. 2014;23(1):97-110. https://doi.org/10.3727/096368912x658845
Ключевые слова: нейрограмма, трансплантат, дистальный конец, проксимальный конец
Учредители:
Ставропольская государственная медицинская академия
Государственный научно-исследовательский институт курортологии
Пятигорская государственная фармацевтическая академия